细胞融合的技术方法多种多样,常见的有转动法和离心法。在进行细胞融合时,脾细胞与骨髓瘤细胞的比例通常为1:1到10:1之间,其中以3:1或5:1的比例为最常用。
1.试剂与材料
(1) 供融合用的脾细胞及骨髓瘤细胞。
(2) 1640培养液100ml。
(3) 完全1640液100ml。
(4) 25% FCS-1640液50ml。
(5) HAT培养液100ml。
(6) 50% PEG:取分子量4000,高纯度的(如来自日本或Serva)PEG 10g放入25ml瓶中进行高压灭菌。使用时,将预热至40℃的1640液10ml与其等量(W/V)混合,检查pH,通常不需要调节。如有变化,可用HCl或NaHCO3进行调整。
(7) 10ml和50ml的灭菌沉淀管或瓶。
(8) 40孔塑料培养盘。
2.操作方法
⑴ 准备脾细胞。
⑵ 在50ml沉淀管中,将108个脾细胞与107个小鼠骨髓瘤细胞混合,并加入50ml的25% FCS-1640液。
⑶ 在室温下以400g离心3分钟,使细胞沉淀。
⑷ 移去上清液。
⑸ 轻轻敲打管底,使沉淀物变得松散,然后将沉淀管放入40℃的水浴中,使其达到融合所需的温度。
⑹ 加入预热至40℃的50% PEG 8ml,使用1ml吸管缓慢滴加,同时摇动沉淀管,观察有颗粒出现,滴加过程应持续约2分钟。
⑺ 加入1ml的1640液,一边滴加一边摇动,持续1分钟。
⑻ 重复⑺步骤一次。
⑼ 再次加入1ml的1640液,一边滴加一边摇动,持续0.5分钟。
⑽ 重复⑼步骤一次。
⑾ 最后加入15ml的1640液。
⑿ 在室温下,以400g离心1分钟,使细胞再次沉淀。
⒀ 去除上清之后,轻轻敲打管底,加入25ml的含有HAT的完全1640液。
⒁ 将融合的细胞液每孔1滴(约0.05ml)滴加到前一日已培养的40孔塑料培养盘中。
⒂ 轻轻摇动后,将培养盘放入5% CO2、饱和湿度的37℃温箱中培养。
⒃ 在第3、6、9、10天时更换为含有HAT的完全1640培养液。要注意轻柔吸取上清液,避免将固定于孔底的细胞吸出,并根据需要补充适量的饲养细胞。
⒄ 在第12、15天时,再次加入含有HAT的完全1640培养液。在每次更换培养液之前,使用倒置显微镜观察,大约在10天左右可见杂交瘤细胞的生长。大多数杂交瘤细胞在10~20天内出现,但也有可能在1个月左右才显示出。
⒅ 对继续生长的杂交瘤细胞进行增殖传代。在传代过程中,根据需要调整,将HAT液及完全1640液替换为10% FCS-1640液。同时,将细胞保存于液氮中并进行克隆化。在此期间,需定期检查抗体的产生,以防止出现抗体细胞的变异和丢失。
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